ANÃLISE DA VIABILIDADE CELULAR DE CALOS DE GENGIBRE ORNAMENTAL
DOI:
https://doi.org/10.37856/bja.v90i3.241Resumo
Objetivou-se induzir a formação de calos e utilizar o corante CTT na quantificação da viabilidade celular dos calos em gemas rizomatosas de gengibre ornamental. Para a indução de calos, gemas rizomatosas foram inoculadas em meio de cultura MS suplementado com 2,4-D, BAP e picloram. Para a viabilidade celular, o tratamento que apresentou maior porcentagem de formação de calos, passou por três subcultivos em intervalos de 10 dias, a cada subcultivo os calos foram coletados e homogeneizados em CTT e realizadas cinco leituras de absorbância. As maiores porcentagens de formação de calos ocorreram na presença de 1,0 e 2,0 mg.L-1 de BAP. O teste de viabilidade utilizando CTT aponta que os calos devem ser subcultivados aos 20 dias devido à maior absorbância, pois atingiram a fase exponencial de divisão celular.Referências
AMUTHA, R.; MUTHULAKSMI, S.; RANI, W. B.; INDIRA, K.; MAREESWARI, P. Physiological studies on evaluation of sunflower (Helianthus annus L.) genotypes for high temperature stress. Research Journal of Agriculture and Biological Sciences, sl, v. 3, n. 4, p. 245-251, 2007.
ASGHARI, R.; SALARI, A.; GHAREHDAGHI, S. Effect of pulsing solution and packaging type under exogenous ethylene on physiological characteristics and post harvesting quality of cut roses (Rosa hybrida). American Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Sciences, Deira, v. 14, n. 4, p. 329-335, 2014.
BARBOZA, T. J. S.; LAGE, D. A.; MOSS, V. B.; SOUZA, C. A.; ALBARELLO, N. Effect of different culture media and plant growth regulators for the optimization of callus induction of Annona mucosa (Jacq.). Revista Brasileira de Plantas Medicinais, PaulÃnia, v. 16, n. 4, p. 905-911, 2014.
BENSON, E. E. Cryopreservation. In: DIXON, R. A.; GONZALES, R. A. (Ed.). Plant cell culture – a practical approach. 2.ed. Oxford: IRL, 1994. 194 p.
BEZERRA, F. C.; LOGES, V. (2005) Zingiberaceae. In: TERAO, D.; CARVALHO, A. C. P. P.; BARROSO, T. C. S. F. (Eds.) Flores tropicais. Brasilia, Embrapa Informações Tecnologicas. 225p.
CARVALHO, L. M.; BUENO, V. H. P.; SANTA-CECÃLIA, L. V. C.; SILVA, R. A.; REIS, P. R. Pragas na floricultura: identificação e controle. Informe Agropecuário, v. 30, n. 249, p. 36-46, 2009.
DUVAL, C. M. The flower production and family farming. Horticultura Brasileira, Campinas, v. 32, n. 2, p. 241-241, 2014.
FERREIRA, D. F. Sisvar: a computer statistical analysis system. Ciência e Agrotecnologia, Lavras, v. 35, n. 6, p. 1039-1042, 2011.
FERREIRA, E. A.; PASQUAL, M.; REZENDE, J. C. Calogênese em plântulas de figueira. Ceres, Lavras, v. 54, n. 312, p. 112-117, 2015.
GEORGE, E. F.; HALL, M. A.; DE KLERK, G-J. Plant propagation by tissue culture. 3.ed. Dordrecht: The Background, 2008. v. 1.
GIACOMETTI, D. Impacto atual da cultura de tecidos de plantas. In: TORRES, A. C.; CALDAS, L. S. (Eds) Técnicas e aplicações da cultura de tecidos de plantas. BrasÃlia: Empresa de Pesquisa Agropecuária, 1990. p.18-25.
GRATTAPAGLIA, D.; MACHADO, M. A. Micropropagação. In: TORRES, A. C.; CALDAS, L.S.; BUSO, J.A. (Ed.). Cultura de tecidos e transformação genética de plantas. BrasÃlia: EMBRAPA/CBAB, 1998. v.1, p. 183-260.
IBRAFLOR. Números do setor: Mercado interno 2014. DisponÃvel em: www.ibraflor.com. Acesso em: 08 jan 2015.
KAOUTHER, B. M.; NADHRA, E.; AHLEM, C.; JEMMALI, A.; DRUART, P. In vitro picloram-induced somatic embryogenesis from leaflets of cherry (Prunus incisa Thunb.). Journal of Life Sciences, New Delhi, v. 5, n. 1, p. 913-920, 2011.
LAMAS, A.M. Floricultura Tropical: técnicas de cultivo e pós-colheita de flores e folhagem. Fortaleza: Instituto Frutal, 2002, 135p.
LYNGEVED, R.; SNIPEN, L. G.; IVERSEN, T-H.; HVOSLEF-EIDE, A. K. Influence of potential growth factors on the prodution of proembryogenic masses of Cyclamen persicum Mill. in bioreactors. Scientia Horticulturae, Amsterdam, v. 118, n. 2, p. 53-59, 2008.
MURASHIGE, T.; SKOOG, F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, Copenhagen, v. 15, n. 3, p. 473-497, Mar. 1962.
NAM, B. H.; JIN, H. J.; KIM, S. K.; HONG, Y. K. Quantitative viability of seaweed tissues assessed with 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride. Journal of Applied Phycology, Dordrecht, v. 10, n. 1, p. 31-36, 1998.
PTAK, A.; BACH, A. Somatic embryogenesis in tulip (Tulipa gesneriana L.) flower stem cultures. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, New York, v. 43, n. 1, p. 35-39, 2007.
REIS, I. N. R. S.; LAMEIRA, O. A.; CORDEIRO, I. M. C. C. Indução da Calogênese em Paricá (Schizolobium parahyba var. amazonicum (Huber ex Ducke) Barneby) Através da Adição de AIB e BAP. Revista Brasileira de Biociências, Bento Gonçalves, v. 5, n. S2, p. 501-503, 2007.
RIBEIRO, T. R.; LOPES, G. G. O.; VIANNA, F. D. Produção de Mudas e Flores de Plantas Ornamentais Tropicais. Petrolina, PE: Embrapa, 2002, 41p.
RIEFLER, M.; NOVAK, O.; STRNAD, M.; SCHMÃœLLING, T. Arabidopsis cytokinins receptor mutants reveal functions in shoot growth, leaf senescence, seed size, germination, root development, and cytokinin metabolism. Plant Cell, Rockville, v. 18, n. 1, p. 40-54, 2006.
SADIA, B.; ANTONY, P.; LOWE, K. C.; POWER, J. B.; DAVEY, M. R. Culture treatments for enhancing post-thaw recovery of cryopreserved suspension cells of potato cv. Desiree. Cellular & Molecular Biology Letters, Wrocław, v. 8, n. 1, p. 979-989, 2003.
SALINGER, J.P. Producción comercial de flores. Zaragoza: Acribia, 1991. 371p.
SUNDARASEKAR, J.; Anthony, J. J. J.; Murugaiyah, V.; Subramaniam, S. Preliminary responses of 2, 4-D and BAP on callus initiation of an important medicinal-ornamental Hymenocallis littoralis plants. Journal of Medicinal Plant Research, sl., v. 6, n. 11, p. 2088-2093, 2012.
VIDIGAL, T. M. A.; SCHUSTER, I.; TEXEIRA, L. R.; COLAUTO, N. B. Regeneration of plants from two types of maize explants submitted to transformation by biolistic. Ciência Rural, Santa Maria, v. 44, n. 10, p. 1804-1809, 2014.
XU, C.; HUANG, B. Root proteonic responses to heat stress in two Agrotis grass species contrasting in heat tolerance. Journal of Experimental Botany, Oxford, v. 59, n. 15, p. 4248-4194, 2008.
ZAPATA, M. J.; SALINAS, C.; CALDERÓN, A. A.; MUÑOZ, R.; BARCELÓ, A. R. Reduction of 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride by the KCN-insensitive, salicylhydroxamic acid-sensitive alternative respiratory pathway of mitochondria from cultured grapevine cells. Plant Cell Reports, Berlin, v. 10, p. 579-582, 1991.
SHAH, Z.; SHAH, S. H.; PEOPLES, M. B.; SCHWENKE, G. D.; HERRIDGE, D. F. Crop residue and fertilizer N effects on nitrogen fixation and yields of legume-cereal rotations and soil organic fertility, Field Crops Research, Amsterdam, v. 4157, p. 1-11, 2003.
PIERIK, R. L. M. (1987). In vitro culture of higher plants. Martinus Nijhoff Publishers, Dordrecht, Netherlands, p. 344.
YEW, C. K.; BHAVANI, B.; JEEVANDRAN, S.; SREERAMANAN, S. The effect of cytokinins on in vitro shoot length and multiplication of Hymenocallis littoralis. African Journal of Biotechnology, sl., v. 9, n. 44, p. 7446-7452, 2010.